DIFERENTES CONCENTRAÇÕES DE NITRATO DE AMÔNIO (NH4NO3) AFETAM O METABOLISMO DO NITROGÊNIO E O DESENVOLVIMENTO DE Acmella oleracea L. (Asteraceae) CULTIVADO IN VITRO
DOI:
https://doi.org/10.61164/remunom.v1i1.3434Palavras-chave:
Jambu, Micropropagação, Nitrogênio, BAPResumo
A deficiência de nitrogênio em hortaliças folhosas, como Acmella oleracea, afeta o crescimento e o metabolismo vegetal, impactando negativamente a produtividade. O objetivo deste estudo foi avaliar o metabolismo do nitrogênio e o desenvolvimento de A. oleracea cultivada in vitro sob diferentes concentrações de nitrato de amônio (NH4NO3). As sementes foram germinadas em meio MS com três concentrações de sacarose (30 g L⁻¹ - T1; 20 g L⁻¹ – T2; 10 g L⁻¹ – T3) e submetidas à análise biométrica após 4 semanas. Não houve diferença significativa nas variáveis biométricas de número de folhas e comprimento da raiz, exceto para comprimento da parte aérea e matéria fresca das plântulas no meio com 30 g L⁻¹ de sacarose. Na etapa de micropropagação, ápices caulinares foram cultivados em meio MS básico (T1), MS com ½ NH₄NO₃ (T2) e MS com 2x NH₄NO₃ (T3), suplementados com 0,4 mg L⁻¹ de BAP. Após 4 semanas, foram realizadas medições biométricas e análises bioquímicas. T1 apresentou desenvolvimento crítico, enquanto T1 e T3 mostraram formação de calos na base dos explantes, dificultando o enraizamento. No T3, observou-se aumento significativo nos teores de nitrato (26,52%), amônio livre (150,68%) e aminoácidos (94,12%), mas uma redução de 20,7% nos carboidratos solúveis totais. O uso de 0,4 mg L⁻¹ de BAP causou toxicidade em plantas de A. oleracea. O aumento das concentrações de N na forma de NH4NO3 pode causar redução no metabolismo do carbono. Assim, concentrações adequadas de nitrato de amônio devem ser ajustadas para otimizar o desenvolvimento de A. oleracea cultivada in vitro.
Referências
AKTAR, Asma et al. Pharmacological and phytochemical review of Acmella oleracea: a comprehensive analysis of its therapeutic potential. Discover Applied Sciences, [S. l.], v. 6, n. 412, 2024.
ALMEIDA, Susan P. et al. In vitro culture of jambu with different growth regulators. Horticultura Brasileira, [S. l.], v. 38, n. 2, p. 134-138, 2020.
CASSIM, Bruno Maia A. R. et al. Nitrogen: from discovery, plant assimilation, sustainable usage to current enhanced efficiency fertilizers technologies – A review. Revista Brasileira de Ciência do Solo, [S. l.], v. 48, e0230037, 2024.
CATALDO, D. A. et al. Rapid colorimetric determination of nitrate in plant tissue by nitration of salicylic acid. Communications in Soil Science and Plant Analysis, v.6, p.71-80, 1975.
CORPES, Rosana S.; SANTOS, Alberdan S. Influência dos reguladores de crescimento 2,4-D e BAP associados aos agentes solidificantes ágar e phytagel na indução de calos de Crinum americanum L. (Amaryllidaceae). Research, Society and Development, [S. l.], v. 10, n. 12, e299101220378, 2021.
DUBOIS, M. et al. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem., v. 28, p. 350–356, 1956.
FELKER, P. Microdetermination of nitrogen in seed protein extracts with the Salicylate-Dichloroisocyanurate color reaction. Anal. Chem., v. 49, p. 1080. 1977.
FERNANDES, Manlio S.; SOUZA, Sonia R.; SANTOS, Leandro A. Nutrição mineral de plantas. 2. ed. Viçosa, MG: Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2018.
FERREIRA, Silvia M. M. et al. Jambu varieties performance under shading screens. Rev. Ceres, Viçosa, v. 68, n. 5, p. 390-395, 2021.
GONÇALVES, Mayra J. et al. Rápida produção de mudas de pitaia (Hylocereus undatus, Cactaceae) por meio da técnica da micropropagação. Acta Biológica Catarinense, v. 7, n. 1, p. 75-81, 2020.
GUIMARÃES, Ana Clara B. et al. Potencial terapêutico do espilantol na Acmella oleracea (jambu): uma revisão da literatura. Revista Multidisciplinar do Nordeste Mineiro, [S. l.], v. 13, p. 1-7, 2023.
KAY, Matthew; WOBBROCK, Jacob O. Package ‘ARTool’. CRAN Repository, p. 1-13, 2016. Disponível em: <https://www.scirp.org/pdf/AM_2014110516415463.pdf> Acesso em: 28 nov., 2024.
KERBAUY, Gilberto Barbante. Fisiologia Vegetal. 3 ed. Porto Alegre: Guanabara Koogan, 2019.
KULUS, Dariusz. Application of synthetic seeds in propagation, storage, and preservation of Asteraceae plant species. In: FAISAL, M.; ALATAR, A. Synthetic Seeds. 1. ed. Springer: Cham, 2019.
LAMEIRA, Osmar A.; RODRIGUES, Simone M.; SOUZA, Isis N. G.; CAMPELO, Meiciane F.; MOREIRA, Ruanny K. V. P. P.; SILVA, Ana C. B.; SANTOS, Mila C. A.; RAMIRES, Allan C. S. Efeitos de diferentes concentrações de nitrato de amônio e nitrato de potássio na micropropagação de Physalis angulata L. Brazilian Journal of Development, Curitiba, v. 6, n. 11, p. 85090-85097, 2020.
LI, Huayi. Nutrients translocation & plant growth in tissue culture. Wageningen: Wageningen University & Research, 2020.
LIU, Xiujie; HU, Bin; CHU, Chengcai. Nitrogen assimilation in plants: current status and future prospects. Journal of Genetics and Genomics, v. 49, n. 5, p. 394-404, 2022.
MORAES, Francielle Kern et al. Morfogênese in vitro de plântulas de Cattleya intermedia Graham ex Hook (Orchidaceae) em diferentes concentrações de meio de cultura basal. Research, Society and Development, [S. l.], v. 12, n. 11, e48121143650, 2023.
MURASHIGE, T; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v.15, p.473-497, 1962.
OLIVEIRA, Kívia S.; FREIRE, Fúlvio A. M.; ALOUFA, Magdi A. I. Influência de reguladores de crescimento e do tipo de explante na morfogênese in vitro de Hancornia speciosa Gomes. Revista Desafios, Palmas, v. 6, n. 4, p. 60-74, 2019.
PINHEIRO, Marcos V. M. et al. Modificações no meio de cultura, fotoperíodo e tempo de cultivo afetam o alongamento e enraizamento in vitro de bananeira cv. Pacovan. Nativa, Sinop, v. 6, n. 1, p. 27-32, 2018.
PRITI, Savant B.; MANJUSHA, Kareppa S. A systemetic and scientific review on the Acmella oleracea and its traditional medical and pharmacological uses. Asian Journal of Pharmaceutical Research, [S. l.], v. 12, n. 1, p. 71-75, 2022.
R CORE TEAM. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria, 2023. Disponível em: <https://www.Rproject.org/> Acesso em: 28 nov., 2024.
RELVAS, Rikelme M. S. et al. Aspectos agronômicos, uso e importância do jambu (Acmella oleracea L.): uma revisão. Scientific Electronic Archives, [S. l.], v.17, n.6, 2024.
SHAH, Durdana et al. Sugar regulates plant growth and development under in vitro conditions. In: KHAN, M. I. R. et al. Plant Signaling Molecules. 1. ed. Elsevier: Woodhead Publishing, p. 257-268, 2018.
SILVA, Andressa O. et al. Effect of shading and growing season on the agronomic performance of jambu. Pesq. Agropec. Trop., Goiânia, v. 53, e77257, 2023.
SONG, Jinnan; YANG, Jingli; JEONG, Byoung Ryong. Growth, quality, and nitrogen assimilation in response to high ammonium or nitrate supply in cabbage (Brassica campestris L.) and lettuce (Lactuca sativa L.). Agronomy, v. 11, n. 12, p. 2556, 2021.
STEIN, Ofer; GRANOT, David. An overview of sucrose synthases in plants. Frontiers in Plant Science, [S. l.], v. 10, n. 95, 2019.
TOLEDO, Jacks A.; BIASI, Luiz A. Multiplicação e enraizamento in vitro da amoreira preta cv. xavante. Cultura Agronômica, Ilha Solteira, v. 27, n. 3, p. 328-339, 2018.
WEATHERBURN, M. W. Phenol-hypochlorite reaction for determination of ammonia. Anal. Chem., v. 39, p. 971–974, 1967.
YEMM, E. W. et al. The determination of amino-acids with ninhydrin. Analyst, v. 80, p. 209–214, 1955.
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